Обґрунтування персоніфікації терапії хворих на гострий неускладнений пієлонефрит із супутніми хронічними запальними хворобами органів малого таза залежно від спектра збудників
##plugins.themes.bootstrap3.article.sidebar##
##plugins.themes.bootstrap3.article.main##
Анотація
Актуальність гострого неускладненого пієлонефриту (ГНП) як медико-соціальної проблеми визначається не тільки значною поширеністю, а й труднощами етіологічної діагностики, а відтак і ефективного лікування.
Мета дослідження: обґрунтувати необхідність персоніфікації лікування хворих на ГНП залежно від виду збудників та стану паренхіматозного кровотоку нирок.
Матеріали та методи. Обстежено 80 жінок репродуктивного віку, хворих на ГНП на тлі хронічних запальних хвороб органів малого таза (ХЗХОМТ). Виконано комплексну мікробіологічну діагностику із застосуванням культурального методу для виявлення класичних бактерій та культурально-ферментативного – для виявлення мікоплазм і уреаплазм. Крім сечі, досліджено біозразки зі статевих шляхів. Ультразвукові дослідження доповнювали кольоровим допплерівським картуванням нирок. Визначали пікову систолічну швидкість кровотоку та вираховували індекс резистентності міжчасткових артерій нирок. Статистичну обробку результатів виконували з використанням програмного забезпечення Microsoft Exсel 2007, Statistica 12. Застосовано критерії Шапіро – Уїлка. Достовірність отриманих даних обчислювали з використанням t-критерію Стьюдента. Порівняння номінальних даних відбувалося з використанням таблиць спряженості з обчисленням непараметричного критерію хі-квадрат (χ2) Пірсона. Статистично значущими вважали розходження при довірчому інтервалі 95% (p < 0,05).
Результати. Встановлено, що ГНП на тлі супутніх ХЗХОМТ за наявності інфікування молікутами у 68,3% хворих зумовлює порушення паренхіматозної ниркової гемодинаміки з найбільш вираженими змінами в групі з мікст-інфекцією класичних бактерій і молікутів, що сягає 79,5% випадків.
Висновки. Застосування допплерографії паренхіми нирок дало змогу виділити групу ризику розвитку фіброзно-склеротичних змін у міжчасткових артеріях нирки у хворих на ГНП, що вимагає відповідного коригування лікувальної тактики згідно з таксономічною належністю мікробних чинників, виявлених як у сечових, так і статевих шляхах. Комплексне застосування мікробіологічної й ультразвукової діагностики з допплерографією нирок обґрунтувало необхідність персоніфікації терапії хворих на ГНП зі спрямуванням на ерадикацію молікутів, як важливої патогенетичної ланки розвитку й рецидивування захворювання.
##plugins.themes.bootstrap3.article.details##
Ця робота ліцензується відповідно до Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Автори зберігають авторське право, а також надають журналу право першого опублікування оригінальних наукових статей на умовах ліцензії Creative Commons Attribution 4.0 International License, що дозволяє іншим розповсюджувати роботу з визнанням авторства твору та першої публікації в цьому журналі.
Посилання
Öztürk R, Murt A. Epidemiology of urological infections: a global burden. World J Urol. 2020;38(11):2669-79. doi: 10.1007/s00345-019-03071-4.
Dudina OO, Slabkyi GO, Myroniuk VI. On the incidence of sexually transmitted diseases among the female population of Ukraine. Ukr Health Nation. 2018;50(3):125-6.
Tutchenko T, Burka O, Boyarchuk I, Trampolska A, Iavniuk V, Ostroukh L. Epidemiological and clinical trends of sexually transmitted infections. Literature review. Reprod Endocrinol. 2021;(58):55-62. doi: 10.18370/2309-4117.2021.58.55-62.
Hrechanyk OI. Comprehensive ultrasound diagnosis of thyroid gland changes in patients with acute pyelonephritis [abstract]. Kharkiv; 2010. 19 p.
Dugan IV, Medvedev VE. Color Doppler imaging in the diagnosis of kidney diseases: Practical manual. Kyiv: Ukrainian doppler club; 2008. 144 p.
Allan PL, Dabbins PA, Pozniak MA, McDicken VN. Clinical Doppler ultrasonography. 2nd ed. Lviv: Medicine of the World; 2007. 376 p.
Rudenko AV. Informativeness of microbiological diagnostics for improving the effectiveness of treatment of acute uncomplicated pyelonephritis in women. J National Acad Med Sci Ukraine. 2017;23(3/4):221-8.
Pasiechnikov SP, editor. Urology. Current protocols for medical care. Scientific and methodological publication. Kyiv: Doctor-Media; 2011. 626 p.
Bonkat G, Bartoletti R, Bruyère F, Cai T, Geerlings SE, Köves B, et al. EAU Guidelines on Urological Infections [Internet]. Arnhem: EAU Guidelines Office; 2024. 57 p. Available from: https://d56bochluxqnz.cloudfront.net/documents/full-guideline/EAU-Guidelines-on-Urological-Infections-2024.pdf.
Grzybowski AM, Ivanov SV, Gorbato MA. Descriptive statistics using Statistica and SPSS statistical software packages. Sci Healthcare. 2016(1):7-23.
Rudenko AV, Romanenko AM, Mitchenko MV, Hrytsenko LM. Kidney ureaplasmosis in terms of evidence medicine (experimental study). Am J Fundam Appl Exp Res. 2019;12(1):72-9.
Rudenko AV, Romanenko AM, Mitchenko MV, Hrytsenko LM, Romaschenko OV. Genital ureaplasmosis (experimental study). Am J Fundam Appl Exp Res. 2020;16(1):37-44.
Catchpowle J, Maynard J, Chang BJ, Payne MS, Beeton ML, Furfaro LL. Miniscule mollicutes: Current hurdles to bacteriophage identification. Sustainable Microbiol. 2024;1(1):qvae019.
Chernova OA, Chernov VM, Mouzykantov AA, Baranova NB, Edelstein IA, Aminov RI. Antimicrobial drug resistance mechanisms among Mollicutes. Int J Antimicrob Agents. 2021;57(2):106253. doi: 10.1016/j.ijantimicag.2020.106253.
Taylor-Robinson D. Mollicutes in vaginal microbiology: Mycoplasma hominis, Ureaplasma urealyticum, Ureaplasma parvum and Mycoplasma genitalium. Res Microbiol. 2017;168(9-10):875-81. doi: 10.1016/j.resmic.2017.02.009.
Dawood A, Algharib SA, Zhao G, Zhu T, Qi M, Delai K, et al. Mycoplasmas as host pantropic and specific pathogens: clinical implications, gene transfer, virulence factors, and future perspectives. Front Cell Infect Microbiol. 2022;12:855731. doi: 10.3389/fcimb.2022.855731.
Souders CP, Scott VCS, Ackerman JE, Khalique MU, Eilber KS, Anger JT, et al. Mycoplasma and Ureaplasma molecular testing does not correlate with irritative or painful lower urinary tract symptoms. J Urol. 2021;206(2):390-8. doi: 10.1097/JU.0000000000001750.
Abankwa A, Sansone S, Aligbe O, Hickner A, Segal S. The role of Ureaplasma and Mycoplasma species in recurrent lower urinary tract infection in females: A scoping review. Reprod Sci. 2024;31(7):1771-80. doi: 10.1007/s43032-024-01513-y.
Schwartz DJ, Elward A, Storch GA, Rosen DA. Ureaplasma urealyticum pyelonephritis presenting with progressive dysuria, renal failure, and neurologic symptoms in an immunocompromised patient. Transpl Infect Dis. 2019;21(2):e13032. doi: 10.1111/tid.13032.
Ngoo A, Eisemann J, Matsika A, Winkle D. Ureaplasma urealyticum infection presenting as pyelonephritis and perinephric abscess in an immunocompromised patient. BMJ Case Rep. 2020;13(5):e234538. doi: 10.1136/bcr-2020-234538.
Shrestha M, Jyothi Ramachandran NaІР DP, Amin S, Pokhrel A, Munankami S. Unveiling Ureaplasma: A Case Report of a Rare Culprit in Pyelonephritis. Cureus. 2024;16(2):e54958. doi: 10.7759/cureus.54958.
Smith DG, Russell WC, Thirkell D. Adherence of Ureaplasma urealyticum to human epithelial cells. Microbiology (Reading). 1994;140(Pt10):2893-8. doi: 10.1099/00221287-140-10-2893.
Horner P, Donders G, Cusini M, Gomberg M, Jensen JS, Unemo M. Should we be testing for urogenital Mycoplasma hominis, Ureaplasma parvum and Ureaplasma urealyticum in men and women? – a position statement from the European STI Guidelines Editorial Board. J Eur Acad Dermatol Venereol. 2018;32(11):1845-51. doi: 10.1111/jdv.15146.
Skjøt-Arkil H, Heltborg A, Lorentzen MH, Cartuliares MB, Hertz MA, Graumann O, et al. Improved diagnostics of infectious diseases in emergency departments: a protocol of a multifaceted multicentre diagnostic study. BMJ Open. 2021;11(9):e049606. doi: 10.1136/bmjopen-2021-049606.
Claeys KC, Blanco N, Morgan DJ, Leekha S, Sullivan KV. Advances and Challenges in the Diagnosis and Treatment of Urinary Tract Infections: the Need for Diagnostic Stewardship. Curr Infect Dis Rep. 2019;21(4):11. doi: 10.1007/s11908-019-0668-7.
Shallcross L, Gaskell K, Fox-Lewis A, Bergstrom M, Noursadeghi M. Mismatch between suspected pyelonephritis and microbiological diagnosis: a cohort study from a UK teaching hospital. J Hosp Infect. 2018;98(2):219-22. doi: 10.1016/j.jhin.2017.09.029.
Kazmierski B, Deurdulian C, Tchelepi H, Grant EG. Applications of contrast-enhanced ultrasound in the kidney. Abdom Radiol (NY). 2018;43(4):880-98. doi: 10.1007/s00261-017-1307-0.
Darmon M, Bourmaud A, Reynaud M, Rouleau S, Meziani F, Boivin A, et al. Performance of Doppler-based resistive index and semi-quantitative renal perfusion in predicting persistent AKI: results of a prospective multicenter study. Intensive Care Med. 2018;44(11):1904-13. doi: 10.1007/s00134-018-5386-3.
Cauwenberghs N, Kuznetsova T. Determinants and prognostic significance of the renal resistive index. Pulse (Basel). 2016;3(3-4):172-8. doi: 10.1159/000442445.
Boddi M, Natucci F, Ciani E. The internist and the renal resistive index: Truths and doubts. Intern Emerg Med. 2015;10(8):893-905. doi: 10.1007/s11739-015-1289-2.
