Зниження рівня апоптозу і відкладення солей при використанні Тутукону в умовах пошкодження тубулярних клітин нирок у разі гіпероксалурії на моделі з використанням щурів

##plugins.themes.bootstrap3.article.sidebar##

PDF (Русский)
Опубліковано: бер 31, 2017
DOI: https://doi.org/10.30841/2307-5090.1(60).2017.115430
Ключові слова:
лікарський засіб на основі рослинної сировини, апоптичні зміни, відкладення солей кристалів, антиоксидантна дія,

##plugins.themes.bootstrap3.article.main##

Sahin Cahit
Отделение урологии, Научно-исследовательская и обучающая клиника им. Луфти Кидар Картал, Стамбул, Gömeç sok. Sabanci-2 Sitesi A1 Kat 4 Daire 24 Acibadem/Kadiköy, Istanbul, Turkey, Туреччина
Sarikaya Sukran
Отделение патологии, Научно-исследовательская и обучающая клиника им. Луфти Кидар Картал, Стамбул, Туреччина
Basak Kayhan
Отделение патологии, Научно-исследовательская и обучающая клиника им. Луфти Кидар Картал, Стамбул, Туреччина
Ali Cetinel Cihangir
Отделение урологии, Научно-исследовательская и обучающая клиника им. Луфти Кидар Картал, Стамбул, Туреччина
Narter Fehmi
Отделение урологии, Научно-исследовательская и обучающая клиника им. Луфти Кидар Картал, Стамбул, Туреччина
Eryildirim Bilal
Отделение урологии, Научно-исследовательская и обучающая клиника им. Луфти Кидар Картал, Стамбул, Туреччина
Saglam Erkin
Отделение урологии, Научно-исследовательская и обучающая клиника им. Луфти Кидар Картал, Стамбул, Туреччина
Sarica Kema
Отделение урологии, Научно-исследовательская и обучающая клиника им. Луфти Кидар Картал, Стамбул, Туреччина

Анотація

Завданням дослідження є оцінювання наслідків протекціоніського характеру лікарського засобу на основі рослинної сировини (Тутукон) на індуковані гіпероксалурією апоптичні зміни і відкладення кристалів солей в епітелії ниркових канальців щурів. Шістдесят самців щурів лінії Вістар були розділені на три групи (по n=20). У тварин з групи I важка гіпероксалурія була індукована уведенням етиленгліколю (ЕГ) (0,75%) протягом 28 днів. Тварини групи II, окрім індукції гіпероксалурії, отримували також Тутукон протягом 28 днів. Тварини групи III використовувалися в якості контрольних і не отримували лікарських засобів. Наявність і ступінь тяжкості відкладення кристалів солей у просвіті канальців визначали методом гістологічного аналізу під світловим мікроскопом, апоптичні зміни клітин ниркових канальців визначали методом імуногістохімічного фарбування для виявлення аспартат-специфічної цістеїнової протеази (Каспаза-3) і фактора некрозу пухлини альфа (ФНП-альфа) на 14-й і 28-й дні відповідно. Оцінювання апоптичних змін шляхом виявлення Каспази-3 свідчить про те, що, хоча у більшості тварин, які отримували тільки ЕГ, виявлено явні апоптичні зміни (n=9), у тварин, які отримували Тутукон, продемонстровані достовірно менші порушення, при менш вираженому апоптозу або його відсутності (n=7). Аналогічні показники отримані і за результатами визначення експресії ФНП-альфа; апоптичні зміни виявлені у 8 (80%) тварин з групи I, а в тварин з групи отримання препарату Тутукон виявлені лише незначні зміни (n=2). Визначення змісту кристалів солей показало, що всупереч явним змінам у тварин з групи I (n=9), а саме – апоптичним змінам, воно було достовірно меншим у тварин, які отримували Тутукон (n=4). Відкладення кристалів солей і апоптичні зміни, індуковані гіпероксалурією, відіграють важливу роль у патогенезі сечокам’яної хвороби, і застосування препарату Тутукон може забезпечувати зниження таких змін завдяки антиоксидантній та протизапальній дії препарату.

##plugins.themes.bootstrap3.article.details##

Як цитувати
Cahit, S., Sukran, S., Kayhan, B., Cihangir, A. C., Fehmi, N., Bilal, E., Erkin, S., & Kema, S. (2017). Зниження рівня апоптозу і відкладення солей при використанні Тутукону в умовах пошкодження тубулярних клітин нирок у разі гіпероксалурії на моделі з використанням щурів. Здоров’я чоловіка, (1(60), 96–104. https://doi.org/10.30841/2307-5090.1(60).2017.115430
Номер
№ 1(60) (2017)
Розділ
Урологія
Авторське право (c) 2020 Sahin Cahit, Sarikaya Sukran, Basak Kayhan, Ali Cetinel Cihangir, Narter Fehmi, Eryildirim Bilal, Saglam Erkin, Sarica Kema

Creative Commons License

Ця робота ліцензується відповідно до Creative Commons Attribution 4.0 International License.

Автори зберігають авторське право, а також надають журналу право першого опублікування оригінальних наукових статей на умовах ліцензії Creative Commons Attribution 4.0 International License, що дозволяє іншим розповсюджувати роботу з визнанням авторства твору та першої публікації в цьому журналі.

Посилання

Hackett RL, Shevock PN, Khan SR (1990) Cell injury associated with calcium oxalate crystalluria. J Urol 144:1535.

Khan SR, Shevock PN, Hackett RL (1989) Urinary enzymes and calcium oxalate urolithiasis. J Urol 142:846.

Lieske JC, Norris R, Swift H, Toback FG (1997) Adhesion, internalization and metabolism of calcium oxalate monohydrate crystals by renal epithelial cells. Kidney Int 52:1291.

Koul H, Kennington L, Nair G, Honeyman T, Menon M, Scheid C (1994) Oxalate-induced initiation of DNA synthesis in LLC-PK1 cells, a line of renal epithelial cells. Biochem Biophys Res Commun 205:1632.

Scheid CR, Koul H, Hill WA, Luber-Narod J, Jonassen J, Honeyman T, Kennington L, Kohli R, Hodapp J, Ayvazian P, Menon M (1996) Oxalate toxicity in in LLC-PK1 cells, a line of renal epithelial cells. J Urol 155:1112.

Scheid CR, Koul H, Kennington L, Hill WA, Luber-Narod J, Jonassen J, Honeyman T, Menon M (1995) Oxalateinduced damage to renal tubular cells. Scanning Microsc 9:1097.

Selvam R, Bijikurien T (1992) Effect of citrate feeding on free radical induced changes in experimental urolithiasis. Indian J Exp Biol 30:705.

Strohmaier WL, Bichler KH, Koch J, Balk KN, Wilbert DM (1993) Protective effect of verapamil on shock wave-induced renal tubular dysfunction. J Urol 150:27.

Sarэca K, Kupeli B, Budak M, Kosar A, Kavukcu M, Durak I, Gogus O (1997) Influence of experimental spermatic cord torsion on the contralateral testes in rats: evaluation of tissue free oxygen scavenger enzyme levels. Urol Int 58:208.

Scheid C, Koul H, Hill WA, LuberNarod J, Kennington L, Honeyman T, Jonassen J, Menon M (1996) Oxalate toxicity in LLC-PK1 cells: role of free radicals. Kidney Int 49:413.

Benyi L, Weilherg Z, Puyun L (1995) Protective effects of nifedipine and allopurinol on high energy shock wave induced acute changes of renal function. J Urol 153:596.

Sarэca K, Bakэr K, Yagcэ F, Topcu O, Akbay C, Sayэn N, Korkmaz C (1999) Limitation of possible enhanced crystal deposition by verapamil in renal parenchyma after shock wave application in rabbit model. J Endourol 13:343.

Cohen PJ (1992) Allopurinol administered prior to hepatic ischemia in the rat prevents chemiluminescence following restoration of circulation. Can J Anesth 39:1090.

Parekh MH, Lobel R, O’Connor L, Leggett RE, Levin RM (2001) Protective effect of Vitamin E on the response of the rabbit bladder to partial outlet obstruction. J Urol 166:341.

Khan SR (1995) Calcium oxalate crystal interaction with renaltubular epithelium, mechanism of crystal adhesion and its impact on stone development. Urol Res 23:71.

Khan SR, Shevock PN, Hackett RL (1992) Acute hyperoxaluria, renal injury and calcium oxalate urolithiasis. J Urol 147:226.

Sarэca K, Yagcэ F, Bakэr K, Erturhan S, Ucak R (2001) Renal tubular injury induced by hyperoxaluria: evaluation of apoptotic changes. Urol Res 29:34.

Ogawa Y, Yamaguchi K, Morozumi M (1990) Effects of magnesium salts in preventing experimental oxalate urolithiasis. J Urol 144:385.

Sarэca K, Bakэr K, Yagcэ F, Erbagcэ A, Topcu O, Uysal O (2000) Unilateral testicular torsion; protective effect of verapamil on contralateral testicular histology. Urol Int 62:159.

Sarэca K, Ozer G, Soygur T, Yaman O, Ozer E, Ustun H, Yaman LS, Gogus O (1997) Preservation of shock-wave-induced renal histologic changes by Dermatan sulphate. Urology 49:145.

Sarэca K, Kosar A, Yaman O, Beduk Y, Durak I, Gogus O, Kavukcu M (1996) Evaluation of ischemia after ESWL: detection of free oxygen radical scavenger enzymes in renal parenchyma subjected to high energy shock waves. Urol Int 57:221.

Itoh Y, Yasui T, Okada A, Tozawa K, Hayashi Y, Kohri K (2005) Preventive effects of green tea on renal stone formation and the role of oxidative stress in nephrolithiasis. J Urol 173(1):271–275.

Cho Hyuk Jin, Bae Woong Jin, Kim Su Jin, Hong Sung Hoo, Lee Ji Youl, Hwang Tae-Kon, Choi Yeong Jin, Hwang Sung Yeoun, Kim Sae Woong (2014) The inhibitory effect of an ethanol extract of the spores of Lygodium japonicum on ethylene glycol-induced kidney calculi in rats. Urolithiasis 42(4):309–315.

Butterweck V, Khan SR (2009) Herbal medicines in the management of urolithiasis: alternative or complementary? Planta Med 75(10):1095–1103.

Calixto JB, Santos AR, Cechinel Filho V et al (1998) A review of the plants of the genus Phyllanthus: their chemistry, pharmacology, and therapeutic potential. Med Res Rev 18:225.

Calixto JB, Yunes RA, Neto AS et al (1984) Antispasmodic effects of an alkaloid extracted from Phyllanthus sellowianus: a comparative study with papaverine. Braz J Med Biol Res 17:313.

Zadra M, Piana M, Brum TF, Boligon AA, Freitas RB, Machado MM, Stefanello ST, Soares FA, Athayde ML (2012) Antioxidant Activity and phytochemical composition of the leaves of Solanum guaraniticum A. St.-Hil. Molecules 17(11):12560–12574.

Wang H, Yang L, Zu Y, Zhao X (2014) Microwave-assisted simultaneous extraction of luteolin and apigenin from tree peony pod and evaluation of its antioxidant activity. Sci World J 2014:506971.

Xi M, Hai C, Tang H, Chen M, Fang K, Liang X (2008) Antioxidant and antiglycation properties of total saponins extracted from traditional Chinese medicine used to treat diabetes mellitus. Phytother Res 22(2):228–237.

Atmani F, Slimani Y, Mimouni M et al (2004) Effect of aqueous extract from Herniaria hirsuta L. On experimentally nephrolithiasic rats. J Ethnopharmacol 95:87.

Nishiura JL, Campos AH, Boim MA et al (2004) Phyllanthus niruri normalizes elevated urinary calcium levels in calcium stone forming (CSF) patients. Urol Res 32:362.

Ariffin A, Rahman NA, Yehye WA, Alhadi AA (2014) Kadir FA:PASS-assisted design, synthesis and antioxidant evaluation of new butylated hydroxytoluene derivatives. Eur J Med Chem 2(87C):564–577.

Bodakhe KS, Namdeo KP, Patra KC, Machwal L, Pareta SK (2013) A polyherbal formulation attenuates hyperoxaluria-induced oxidative stress and prevents subsequent deposition of calcium oxalate crystals and renal cell injury in rat kidneys. Chin J Nat Med 11(5):466–471.